GC-Plenti-SFFV-HSPB1(human)-V5-P2A-puro
过表达慢病毒产品信息
| 产品名称 | GC-Plenti-SFFV-HSPB1(human)-V5-P2A-puro | ||
| 基因名称 | HSPB1 | 物种 | 人(Human) |
| 基因全称 | heat shock protein family B (small) member 1 | 基因转录本 | NM_001540.5 |
| 基因别称 | CMT2F, HMN2B, HMND3, HSP27, HSP28, Hsp25 | 表达蛋白 | NP_001531.1 |
| 基因ID | 3315 | 转录本长度 | 615bp |
| 荧光表达 | 无 | 筛选标记 | Puro |
基因基本信息
人HSPB1基因,亦称HSP27,是人类小热休克蛋白(sHSP)家族中研究最为深入的成员之一,定位于染色体7q11.23,包含3个外显子。编码一种TP非依赖性分子伴侣,在细胞应激防御、蛋白质稳态维持、细胞骨架动力学调控及凋亡抑制中发挥核心作用。HSPB1在骨骼肌、心肌和平滑肌中表达最为丰富,其表达受热休克转录因子HSF1的经典调控,并通过多层级磷酸化修饰(Ser15、Ser78、Ser82)实现功能状态的动态切换。HSPB1的寡聚化状态即从大型多聚体到二聚体/单体的转换是其功能调控的核心机制,直接决定其伴侣活性与细胞保护能力。在病理层面,HSPB1的功能获得性突变是轴索型腓骨肌萎缩症(CMT2F)和远端遗传性运动神经病(dHMN)的明确致病原因,突变蛋白通过异常聚集和神经丝转运障碍导致运动神经元变性。
蛋白结构:N端区域(约1-90位),包含保守的WDPF基序(Trp-Asp-Pro-Phe),WDPF基序基序在HSPB1寡聚化中发挥关键作用。N端区域还含有Ser15、Ser78和Ser82三个主要的磷酸化位点,这些位点的磷酸化状态直接调控HSPB1的寡聚化行为。
α-晶体蛋白结构域(约90-180位),这是小热休克蛋白家族的定义性特征,由6至8个β-链组织成两个β-折叠片层,两侧为可变长度的N端和C端延伸。该结构域是HSPB1行使分子伴侣功能的核心区域,也是绝大多数致病突变的发生部位。HSPB1的ACD中含有唯一的半胱氨酸残基Cys137,位于β7链中,该残基在氧化条件下可形成分子间二硫键,导致HSPB1二聚体的交联。
C端区域(约180-205位):较短且具有高度柔性,参与寡聚体的稳定化。该区域包含一个保守的I/V-X-I/V基序,被认为与底物结合有关。
慢病毒感染快速指南
1.将目的细胞按30%汇合度接种到24孔板,约3-5×104细胞数/孔,不同细胞因为细胞大小不同细胞数量会不同,快速指南以细胞数量为5×104为例,加入500uL完全培养基进行细胞培养。
2.接种后12-20h感染阴性对照慢病毒(接种细胞至病毒感染细胞时间不宜太长,否则细胞增殖影响细胞密度不利用后期抗性筛选)。
3. 加病毒量计算方法:(细胞数×MOI值/病毒滴度)×103=病毒量(uL),加病毒量见下表。同时加入Polybrene,每孔加0.25uL,浓度为10mg/mL Polybrene,细胞培养液中终浓度为5ug/mL。
病毒液滴度(TU/mL) | MOI=10(uL) | MOI=20(uL) | MOI=40(uL) | MOI=80(uL) | MOI=100(uL) |
| 1×108TU/mL | 5uL | 10uL | 20uL | 40uL | 60ul |
4.感染16-20h后更换培养基,弃去培养基,每孔加入500uL新鲜的培养基。
5. 感染后48-96h显微镜观察荧光。(注:如果48h-96h期间细胞汇合度达到100%,请及时传代培养)。
6. 建议将48孔板细胞进行传代,传代12孔板,后继续观察荧光,根据细胞状态和荧光细胞比例综合判断细胞感染最佳MOI值。一般选择细胞生长良好,感染效率80%左右的感染条件作为最佳感染条件。(注:100%荧光感染不是细胞最佳MOI值,因为可能会造成细胞慢病毒感染拷贝数太高,影响细胞正常生长状态)。
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